Жидкости культуральные

Решение. Учитывая малые концентрации питательных солей я биомассы в культуральной жидкости, примем для дальнейшего расчета ее физико-химические свойства по воде при температуре t — 35 °С [c.277]

ЖИДКОСТЬ ж. см. тж. ЖИДКОСТИ. культуральная Ж. Первичный продукт микробиологического синтеза, включающий неорганические, органические и биологические компоненты. [c.142]

Количество кислорода, поглощенного культуральной жидкостью (водой), по (9.55) [c.279]

Теплообменные процессы в биохимическом производстве протекают практически на всех технологических стадиях. На стадии приготовления питательной среды в теплообменных аппаратах осуществляют тепловую стерилизацию солевых потоков воды, повторно используемой культуральной жидкости. Выносные и встроенные теплообменники используются на стадии ферментации для снятия биологического тепла. Тепловая обработка суспензий микроорганизмов используется для улучшения условий концентрирования клеток. Тепловое воздействие или термообработку микроорганизмов применяют для уничтожения живых клеток, для охла- [c.121]

Пример 9.4. Рассчитать количество кислорода, растворяемого в культуральной жидкости при температуре i = 35 °С и избыточном давлении = 0,05 МПа. В качестве ферментатора принят сосуд с перегородками и с открытой турбинной мешалкой. Проток культуральной жидкости составляет G = 500 кг/ч время пребывания ее в аппарате т = 4 ч. [c.277]

В промышленных масштабах ультрафильтрацией очищают сточные воды, отделяют культуральные жидкости от продуктов микробиологического синтеза, концентрируют биологически активные вещества белки, ферменты, антибиотики и т. д. [c.23]

На концентрацию растворенного в культуральной жидкости кислорода и в целом на кинетику роста микроорганизмов значительное влияние оказывают физико-химические характеристики среды (pH среды, еН среды, температура) [43, 44]. В то же время в процессе жизнедеятельности микроорганизмы, выделяя в среду продукты клеточного метаболизма, изменяют ее вязкость, поверхностное натяжение, растворимость кислорода, углеродсодержащего субстрата, условия сегрегации клеток, реологические характери- [c.86]

Выход готового продукта от культуральной жидкости до водного концентрата перед лиофильной сушкой, % [c.290]

Удаление солеотложений Культуральная жидкость для предотвращения выделения НаЗ [c.13]

Условия функционирования узла следующие. В биореактор поступают потоки питательной среды /.], нейтрализующего агента 2 и культуральной жидкости L (после сепарационного разделения последний содержит определенное количество клеток микроорганизмов). В отводимом из сепаратора потоке Ц находятся концентрированная биомасса микроорганизмов и некоторое количество неутилизированной питательной среды (субстрата). Поток суспензии микроорганизмов из биореактора в сепаратор обозначим з. Биореактор имеет систему охлаждения II, обеспечивающую поддержание заданной температуры процесса ферментации в условиях выделения тепла при реакции биосинтеза. Суспензия микроорганизмов при сепарации дополнительно подогревается. Биореактор представлен в виде трех операторов — I — смешение , II — теплообмен , III — биохимический синтез , а сепаратор в виде двух операторов — IV — теплообмен и V — разделение . [c.19]

Согласно развиваемому системному подходу к анализу сложной совокупности процессов на микро- и макроуровнях, к эффектам, определяющим поведение системы на макроуровне, относится массопередача. Массообменные процессы в биореакторе непосредственно влияют на рост микроорганизмов, определяя скорость транспорта питательных веществ к клеткам и отвод продуктов метаболизма в среду в количестве, соответствующем стехиометрическим коэффициентам. Наибольший практический интерес, с точки зрения ограничения скорости процесса ферментации, представляют такие элементы питания, как кислород и углеродсодержащий субстрат, учитывая большую удельную потребность в них клеток, низкую растворимость в культуральной жидкости и присутствие в ферментационной среде в виде дисперсных фаз. [c.87]

Наибольшее практическое значение, ввиду низкой растворимости кислорода в жидкости (для культуральных сред при 32— 35°С 6-10 з г/л), имеет межфазный переход газ—жидкость , а для сегрегированной системы жидкость—клеточный агломерат . При этом общий коэффициент массопередачи определяется массо-отдачей кислорода в жидкой фазе, т. е. [c.88]

В табл. 2.13 дана краткая характеристика основных используемых методов оценки массообменных характеристик. Автоматическое (непрерывное) измерение концентрации растворенного в культуральной жидкости кислорода обеспечивается с помощью электрохимических или полярографических датчиков кислорода. [c.90]

Реакторы. В биохимическом производстве широкое применение находят реакторы для проведения химических превращений. В большинстве своем химические реакторы используются для процессов подготовки сырья, питательной среды, химической обработки (обработка химическими реагентами — флоккулянтами культуральной жидкости), химической стерилизации среды. В настоящем разделе представляет интерес рассмотреть влияние условий гидродинамического смешения в реакторе на показатели процесса превращения вещества в связи с развиваемым системным подходом к анализу процессов на микро- и макроуровнях. Рассмотрим достаточно общий случай проведения реакции химического взаимодействия двух компонентов, раздельно поступающих в аппарат с мешалкой. Схема движения жидкостных потоков в реакторе изображена на рис. 3.6, а. [c.115]

Модель идеального перемешивания для аэробного процесса ферментации. Система уравнений модели относительно концентраций микроорганизмов, субстрата и растворенного в культуральной жидкости кислорода имеет вид uXo + hi(S, X, )XV= vX + V dX/dt) [c.140]

I — последовательное соединение биореактора / и сепаратора 2 с возвратом осветленной культуральной жидкости на стадию ферментации (в смеситель 3) и отбором (после сепаратора) сгущенной биомассы для последующей обработки (плазмолиз, сушка) [c.184]

Изучение влияния примесей минеральных солей на миграционный перенос L-лизина через катионообменную мембрану проводилось на установке, ранее нами описанной 1 ]. В качестве добавок при составлении исходных растворов L-лизина ( eHijNaOa l) применялись хлористые соли натрия и аммония. Выбор этих солей обусловлен необходимостью подобрать электролит, наиболее близкий к солевому составу культуральной жидкости. Культуральная жидкость L-лизина содержала 20—25 г/л основного вещества, примесь нейтральных аминокислот 3 г/л и минеральных солей до 30 г/л. Влияние примесей катионов NH и Na+ в исходном электродиализуемом растворе на миграционный перенос L-лизина изучалось при [c.118]

На основе таких аппаратов создана [117] установка для концентрирования и очистки ферментных препаратов методом ультрафнльтрации (рис. 111-14). Установка оснащена двенадцатью аппаратами 2 общей рабочей поверхностью 23 м . В исходной культуральной жидкости около 3% сухого вещества с небольшим содержанием ферментов. Конечное содержание сухих веществ 30—45%. Производительность установки 150—250 л/ч. Полученный концентрат представляет собой густой сироп. [c.122]

В одной серии опытов использовалась культуральная жидкость а с предварительной грубой очисткой на центрифуге с фактором разделения Кр = 30, в другой — жидкость б прозрачного вида, достигнутого центрифугированием при Л = 2340. Из приведенных данных видно, что при давлении 0,3 МПа имеются весьма незначительные потери ферментати пиой активиости с фильтратом, а при давлениях 0,6 МПа и выше эти нотс )и практичеокн отсутствуют. Проницаемость мембраны при давлениях свыше [c.287]

МПа (рис, У1-4) практически остается постоянной. Поэтому проведение процесса ультрафильтрации культуральных жидкостей на мембранах, использованных в работе [I, с. 18], целесообразно при сравнительно иевыооких давлениях (около 0,5 МПа). [c.287]

При концентрировании культуральной жидкости в 100 раз содержаиис сухих веществ по сравнению с исходным раствором повысилось в концентрате в 7,6 раза, а глюкоамилазная активность возросла в 98,2 раза в единице объема. Благодаря тому что в фильтрат ушла основная масса неактивного белка, удельная активность в концентрате повысилась в 6,1 раза. [c.287]

Первые сообщения о неростовом окислении н-алканов касаются газообразных углеводородов. В опытах культура Pseudomonas methani a интенсивно росла на метане и не развивалась на других газообразных углеводородах [46]. Но при наличии в среде метана и этана в. культуральной жидкости накапливается уксусная кислота, этанол и ацетальдегид, на смеси метана и пропана, пропанол, пропионовая кислота и ацетон, метана и бутана- н-масляная кислота и бутанок. [c.107]

При культивировании в жидкой среде штамма Р. fluores ens 17 с ДБТ в качестве единственного источника углерода остаточное количество субстрата через 6 суток составило около 33% при внесении в среду глицерина - дополнительного источника углерода -1%. Превращение ДБТ в культуральной жидкости сопровождалось изменением окраски от бесцветной до желтой, оранжевой и коричневой. Аналогичные результаты были получены для P.fluores ens 26. [c.126]

В результате биодеструкции дисульфидов выявлено, что дибутилдисульфид разлагается интенсивнее (степень деструкции 60 %), чем диоктилдисульфид (степепь деструкции 7 %). По-видимому, биотрансформация дисульфидов осуществляется путем расщепления связи S-S с образованием соответствующих меркаптанов, так как в результате химического анализа установлено их наличие в культуральной жидкости меркаптанов. [c.129]

Доломатов М.Ю., Телин А.Г, Хисамутдинов Н.И. и др. Исследования фильтрации культуральной жидкости, содержащей микрофлору заводняемого нефтяного пласта. // Геология, геофизика и разработка нефтяных месторождений . - 1995, №1. -с. 56-59. [c.67]

Стабилизатор пен, образования гелей с водорастворимыми полимерами и образования прямой стабильной эмульсии в пластовых условиях (0,2%) основа состава для растворения АСПО в щелочной среде Компонент в состаре культуральной жидкости для предотвращения образования НаЗ в пласте [c.25]

Разработан режим постферментационной обработки культуры - выдерживание бактериальной суспензии в течение 48 часов при пониженных температурах (4-б С), обеспечивает 100% спорообразование. Сравнительная оценка методов концентрирования и отделения от культуральной жидкости бактериальной биомассы, таких как фло-куляция, флотация и флокуляционная флотация, показала, что наиболее эффективным является метод флокуляционной флотации, позволяющий отделить от среды до 75% клеток. [c.159]

Полученные результаты показали, что наличие сульфат-иона не является необходимым условием для включения селена в органические еоединения исследуемого бактериального штамма, но присутствие в среде сульфата аммония обеспечивает более высокое нако1шение биомассы в культуральной жидкости, чем при замене его на хлорид аммония, что в конечном итог е приводит к увеличению на 10% съема с ферментации сухой биомассы, обогащенной селеном. [c.168]

А — свежая вода Б — воздух В — культуральная жидкость Г — биологически очищенная вода Д — суспензия микроорганизмов Ё — сгущенная биомасса Ж — отработанный газ I — подготовка засевной биомассы // —подготовка питательной минеральной среды 1/1 — подготовка субстрата /V — ферментация V — сепарациоиное сгущение V/— термообработка и выпарка УЯ — сушка V///— биохимическая очистка /X — стерилизация [c.15]

В Представленной схеме наглядно видно многообразие технологических элементов, их взаимосвязь и целенаправленное функционирование. Так, из схемы ясно, что одна пз основных стадий — стадия фep лeнтaциг — будет работать эффективно лишь в том случае, если качественно функционируют стадии подготовки сырья и засевной биомассы. В то же время работа стадии ферментации во многом определяет работу последующих стадий — сгущения, сушки, очистки. Имеющиеся замкнутые циклы по жидкостным и газовым потокам создают возможность обратного влияния на процесс ферментации процессов подготовки сырья, сгущения и обработки биомассы. Использование, например, отработанной культуральной жидкости на стадии ферментации представляется выгодным и целесообразным с точки зрения минимизации потребления свежей воды. Однако повторное потребление культуральной жидкости в известной степени ухудшает работу стадии ферментации, так как в этой воде содержатся продукты метаболизма, не-утилизируемый субстрат и т. п. [c.16]

Поток, поступающий в подсистему, обозначен Сь На флотаторах обеспечивается разделение потока с получением концентрированной биомассы, поступающей на дальнейшую обработку по схеме (поток Ljк), культуральной жидкости с нефлотировавшими клетками, возвращаемой для повторного разделения (поток Ьк.]) и осветленной культуральной жидкости, выводимой из схемы для биологической очистки (поток ко)- Перед сепарационным сгущением биомассы добавляется горячая вода (поток (Эг). Из схемы выводится в качестве целевого [c.21]

В биореактор поступают извне технологические потоки, с которыми в аппарат вводятся потоки тепла Рь Рг, Qз, Р4 и Qi, выводятся потоки тепла Qs, Qa и Рю, а также имеются внутренние источники тепла Q6, Q . Перечисленные потоки включают Ql — поток тепла с культуральной жидкостью Рг — поток тепла с раствором минеральных солей Рз — поток тепла с углеродсодержащим субстратом Р4 — поток тепла с технологической водой Рб — поток тепла с аэрирующим газом Ре — биологическое тепло процесса Q — тепло, выделяемое при механическом перемещива-нии Ре — поток тепла с отбираемой суспензией микроорганизмов Рэ — поток тепла с отработанным газом Рю — поток тепла, отводимый через теплообменники. В результате тепловой баланс биореактора будет [c.100]

Модели микро- и макросмешения ферментационной среды формируют модель III ступени — модель гидродинамики, обобщенно учитывающую эти эффекты. Оказывая непосредственное влияние на процессы транспорта вещества и энергии, условия микро-и макросмешения определяют также и конкретный вид уравнений моделей массообмена и теплообмена, представленных соответствующими блоками на схеме. Математическое описание моделей каждого блока может быть достаточно сложным. Так, модель массообмена включает в общем случае описание процессов транспорта субстрата из газовой нли малорастворимой жидкой фазы в культуральную жидкость, транспорт питательных элементов к клеточной оболочке одиночной клетки или к клеточному агломерату, диффузию внутрь агломерата и т. д. [c.111]

При проведении процессов культивирования микроорганизмов в биореакторах с интенсивной аэрацией и перемешиванием среды, обеспечивающих высокую скорость сорбции кислорода, концентрация его в культуральной жидкости может превышать критическую для данной культуры ( i,> Скрит). В ЭТИХ УСЛОВИЯХ удельная скорость роста микроорганизмов не будет зависеть от концентрации кислорода в среде, и кинетика роста определится соотношением р,= л(5). Используя в качестве кинетического соотношения модель Моно—Иерусалимского, получим следующую систему уравнений [c.141]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология