Матричные полинуклеотиды

Продвигаясь вдоль матричного полинуклеотида от 5 -конца к З -концу, рибосома через какое-то время освободит 5 -концевой участок матрицы. Тогда этот участок может начать считывать другая рибосома. Так же отойдя от 5 -концевой части, она предоставит возможность начать считывание третьей рибосоме. И так далее. Так, идя вдоль матрицы друг за другом, ряд рибосом оказываются читающими одну и ту же информацию и, следовательно, синтезирующими идентичные полипептидные цепи, но находящимися на разных стадиях формирования полипептида. Это схематически представлено на рис. 31, где рибосомы у З -конца матрицы уже нарастили длинный, почти завершенный полипептид, рибосомы в середине несут полипептид в половину его запрограммированной длины, и рибосомы у 5 -конца содержат лишь короткие пептиды, в самом начале их удлинения. Такая структура, где матричный полинуклеотид ассоциирован со многими транслирующими рибосомами, получила название полирибосомы. [c.55]

Ассоциация рибосомы с матричным полинуклеотидом [c.302]

Дезаминирование аденина в составе полинуклеотида (превращение в гипоксантин) меняет информац. смысл н приводит к точковой мутации. Дезаминирование гуанина (превращение его в ксантин) в составе матрн шых полинуклеотидов приводит к блокированию репликации и транскрипции. Метилирование П. о. по N-7 в составе матричных полинуклеотидов не сопровождается изменением генетич. смысла основания. [c.142]

В процессе белкового синтеза рибосома каждый раз связана лишь с ограниченным отрезком матричного полинуклеотида (мРНК). Так как отрезки матричного полинуклеотида, непосредственно связанные с рибосомами, оказьшаются защищенными от действия нуклеаз, они могут быть выделены после нуклеазной обработки комплексов рибосома матрица. Длина таких отрезков была найдена равной от 20 до 60 нуклеотидных остатков. В то же время, длина кодирующей последовательности мРНК обычно превосходит 300 нуклеотидных остатков. Отсюда давно стало очевидно, что для считывания всей кодирующей последовательности мРНК рибосома должна последовательно пройти (или, что то же самое, последовательно протащить через себя) матрицу, от 5 -концевой части кодирующей последовательности до ее З -концевой части. Другими словами, рибосома должна работать как лентопротяжный механизм. [c.54]

Как бы то ни было, общие соображения заставляют предполагать, что ассоциация матричного полинуклеотида с рибосомой допускает сравнительно легкое скольжение цепи полинуклеотида вдоль мРНК-связывающего участка. Во всяком случае, это, по-видимому, требуется для последовательного прочитывания цепи мРНК при трансляции. Положение остатков тРНК в рибосоме и возможная траектория их [c.139]

Рассмотрение элонгационного цикла удобно начать с состояния транслирующей рибосомы, когда пептидил-тРНК занимает Р-участок, а А-участок с установленным там кодоном матричного полинуклеотида вакантен (см. рис. 80, верх). Такая рибосома способна к связыванию очередной аминоацил-тРНК. [c.154]

Анализ ложного кодирования в случаях с поли(и) и другими матричными полинуклеотидами, как in vitro, так и in vivo, в том числе под действием различных аминогликозидных антибиотиков, показьшает, что наиболее частыми являются ошибки вследствие спаривания (или противостояния без спаривания) G U или U О, а также U U в любом месте анти-кодон-кодонового дуплекса. Более редки ошибочные спаривания или противостояния и С или С U бьтают ошибки за счет противостояния С антикодона против А кодона. Лишь в исключительных случаях возможны ошибки с образованием пар (или противостояний) А G или О А, а также противостояний С С, А А и G G. [c.170]

В соответствии с вышесказанным, имеются четыре способа измерения транслокации, основанных на одном из следующих критериев 1) реакция транспептидации с низкомолекулярным акцепторным субстратом —пуромицином 2) связывание аминоацил-тРНК 3) освобождение деацилированной тРНК 4) передвижение матричного полинуклеотида. [c.196]

Перемещение матричного полинуклеотида как тест транслокации наиболее сложен в техническом отношении. Он может быть или непрямым, когда основан на появлении компетентности к связыванию аминоацил-тРНК, специфической к кодону, следующему за ранее фиксированным в рибосоме, или прямым, если анализируется непосредственно изменение закрытого (защищаемого) рибосомой отрезка матрицы. В прямом тесте было показано, что сдвиг полинуклеотидной матрицы относительно рибосомы на один триплет нуклеотидов сопровождает появление компетентности к пуромицину и к связыванию аминоацил-тРНК. [c.198]

Уже отмечалось, что транслокация сопровождается перемещением матричного полинуклеотида на один кодон. В процессе этого сдвига и после него связь между антикодоном пептидил-тРНК и кодоном матрицы сохраняется кодон-антикодоновый комплекс движется, повидимому, как целое из А-участка в Р-участок рибосомы. [c.205]

Естественно поставить вопрос, что служит ведущим актом —перемещение матрицы или перемещение пептидил-тРНК Ряд фактов указывает на то, что ведущим является транслокационное перемещение тРНК, которая своим антикодоном тянет за собой кодон матрицы. В качестве одной из ярких демонстраций независимости транслокации от матричного полинуклеотида можно рассматривать открытие рибосомного синтеза полипептида из аминоацил-тРНК в отсутствие матричного полинуклеотида в этом случае было показано существование нормального элонгационного цикла с EF-G GTP-катализируемой транслокацией. Наиболее прямым указанием на ведущую роль [c.205]

Инициация в процессе биосинтеза белка означает не просто начало элонгации. Прежде всего, так как начало кодирующей последовательности мРНК не совпадает с началом полинуклеотидной цепи, а всегда находится, отступя от ее 5 -конца (иногда на значительное расстояние), необходимо точное узнавание первого кодона на внутренней части цепи. Это узнавание определяет не только начало полипептидной цепи, которая синтезируется, но и задает фазу всего дальнейшего считывания мРНК по триплетам, т. е. абсолютно критично для всей аминокислотной последовательности полипептида. Другими словами, именно инициация определяет фиксированную точку на матричном полинуклеотиде, с которой начинается отсчет триплетов без запятых (см. гл. А.П). [c.221]

Известно, что при использовании некоторых синтетических матричных полинуклеотидов, например поли(и, G), инициация с участием инициаторной F-Met-tRNA, инициирующего кодона GUG и IF-2 с ГТФ может происходить также и без IF-3. [c.232]

Инициирующий кодон. AUG — единственный инициирующий кодон природных эукариотических мРНК. В подавляющем больщинстве случаев им служит первый триплет AUG от 5 -конца матричного полинуклеотида, хотя это не абсолютное правило для всех мРНК. [c.246]

Комплекс нативной 40S субчастицы с инициаторной метионил-тРНК (включающий некоторые факторы инициации и ГТФ) вступает в ассоциацию с мРНК. На этом этапе абсолютно необходимым оказывается eIF-3. Механизм его действия не ясен. Предполагается, что он, будучи связанным с нативной 40S субчастицей, участвует в формировании центра, узнающего мРНК. Ему приписывают также функции белка, способствующего расплетанию вторичной структуры матричного полинуклеотида в [c.250]

Ассоциация рибосомной частицы с мРНК и узнавание инициирующего кодона у эукариот четко разграничены в пространстве и времени. Ассоциация 40S субчастицы с мРНК происходит на 5 -конце матричного полинуклеотида. В то же время в больщинстве случаев инициирующий кодон удален от 5 -конца на несколько десятков нуклеотидов, а в некоторых редких случаях — даже на сотни нуклеотидов. [c.253]

Синтез полипептидной цепи на рибосоме. Для начала синтеза полипептидной цепи необходимы следующие условия рибосома должна связываться с и-РНК или заменяющим ее матричным полинуклеотидом в окружающей среде должны присутствовать аминоацилированные т-РНК и белковые факторы (р1р2) трансляции и ГТФ, а также ионы Mg + и К или NH + в определенной концентрации. При соблюдении этих условий рибосома может начать синтез. Полинуклеотидная цепь и-РНК, подобно ленте на [c.281]

Матричность полинуклеотидов бесспорна. Вопрос матрич-ности полипептидов должен еш,е стать предметом непредвзятого исследования (см. [421]). Можно предполагать, что скорости спонтанного синтеза и матричной полимеризации для разных последовательностей мономеров неодинаковы и для полипептидов, и для полинуклеотидов. Однако и этот вопрос требует тщательного исследования (литературного, теоретического и экспериментального). [c.48]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология