Добавление солей к буферу

Буферные растворы (или просто буферы) представляют собой такие растворы, которые содержат в определенном отношении слабую (или средней силы) кислоту и сопряженное основание. Эти растворы обладают очень важным свойством в некотором интервале поддерживать постоянным pH раствора при его разбавлении или добавлении небольших количеств кислоты или основания. Каким же образом работает буфер Пусть например, имеется аммиачный буфер, который состоит из эквивалентных количеств соли аммония и аммиака. В водном растворе для отдельных компонентов буфера устанавливаются равновесия [c.387]

Механизм действия аммонийного буфера заключается в том, что при добавлении к буферу сильной кислоты происходит реакция нейтрализации и кислота заменяется эквивалентным количеством соли по уравнению [c.78]

Третий случай буферы — слабые кислоты или слабые основания в присутствии их солей. Буфером называют раствор, способный сохранять примерно постоянное значение pH при добавлении сравнительно больших количеств кислоты или основания. Конечно, ни один буферный раствор не имеет бесконечной емкости, и если выйти за пределы емкости, то pH раствора начнет заметно меняться. Одной из наиболее тонко отрегулированных буферных систем является кровь. Хотя какой-то вклад в буферные свойства крови вносит гемоглобин и другие белки, а также фосфаты, все же главным рабочим механизмом буферной системы служит пара бикарбонат натрия — угольная кислота. Истощение этой буферной системы при сильном повышении кислотности приводит к резкому изменению pH с вытекающими отсюда роковыми последствиями. [c.222]

Слабая кислота и ее соль защищают следующим образом раствор от изменения pH при добавлении небольшого количества кислоты или основания. Если добавляется основание, слабая кислота буфера его нейтрализует, предотвращая сильное изменение pH если добавляется кислота, то она нейтрализуется основанием - анионом слабой кислоты, также не допуская сильного изменения pH. [c.459]

Добавление некоторых солей органических кислот повышает растворимость органических веществ в водной фазе аналогично добавлению неорганических буферов эффект высаливания). Так, например, некоторые органические вещества, плохо растворимые в дистиллированной воде, очень хорошо растворяются в водных растворах натриевых солей бензойной кислоты или ксилолсульфокислоты [100]. [c.394]

Что смеси слабых кислот с их солями действительно должны обладать буферным действием, видно и из соответствующих кривых титрования. Например, пологий участок кривой титрования уксусной кислоты едким натром (см, рис. 46) соответствует тем моментам, когда оттитрована (т. е. превращена в соль) только часть СНзСООН, а другая часть ее присутствует в свободном состоянии. Следовательно, смесь СНзСООН и СНлСООЫа представляет собой буфер, весьма медленно изменяющий значение pH при добавлении кислоты или щелочи. [c.280]

Щелочь, добавленная к буферу, взаимодействует с солью, в результате чего образуется слабое основание, и pH смеси мало изменяется [c.78]

Степень удерживания образца снижается с увеличением ионной силы подвижной фазы и увеличивается с увеличением ионообменной емкости сорбента. Ионная сила подвижной фазы возрастает при возрастании концентрации буфера и сохранении неизменным pH или при добавлении соли. Важна также концентрация буферных растворов, так как в растворе наблюдается конкуренция между ионами образца и буфера. Уменьшение концентрации буферного раствора увеличивает сродство смолы к образцу, что приводит к увеличению времени удерживания. Концентрация буферного раствора колеблется от 0,001 до 6 моль/л, причем верхняя граница определяется растворимостью соли, используемой в качестве буфера, а нижняя — самой буферной силой, так как в слабом буферном растворе нельзя контролировать уровень pH. Сильных буферных растворов также следует избегать, так как возможно выпадение осадка и забивание колонок. Сила растворителя зависит от типа противоиона, причем степень удерживания образца увеличивается в ряду, обратном ряду активности ионов, приведенному выше. [c.36]

Добавление солей к буферу [c.67]

В основе взаимодействия белков со стенкой лежит в основном механизм катионного обмена. Это возможно, поскольку и в случае отрицательного полного заряда молекулы (особенно при основных pH) всегда имеются в наличии катионные группы, например аргинин-радикалы в цепочках полипептидов. Поэтому путем добавления солей щелочных металлов (например сульфата калия) к буферу, как и в случае ионообменной хроматографии, достигается конкуренция кулоновскому притяжению и вызванное этим притяжением взаимодействие белок - стенка явно уменьшается. Следуя этой концепции, можно для стандартных белков в широкой области р1 (р1 5-11) достичь эффективности 50000-100000 тарелок на метр. И в этом случае недостатком является сравнительно высокая электропроводность буфера (эффективное охлаждение ) которая вынуждает использовать поля низкого напряжения (5 кВ) и длинные капилляры с маленьким внутренним диаметром (25 мкм). Кроме того, большие ионные силы уменьшают как ЭОП, так и -потенциал пробы, что вместе с вышеназванными факторами приводит к длительным временам анализа. [c.67]

Для каждого деполяризатора приводятся данные, полученные в растворах различного состава, причем индифферентные электролиты располагаются в порядке возрастания их способности к образованию комплексной связи с деполяризатором, т. е. от электролитов, проявляющих незначительную тенденцию к комплексообразованию (например, СЮ ), к электролитам, обладающим более ярко выраженной способностью давать координационные связи. Концентрации составных частей раствора выражены в молях на литр. Для буферных растворов в большинстве случаев приводится концентрация соответствующей соли и pH, причем запись дается сокращенно без добавления слова буфер . [c.502]

При добавлении соли тория к раствору фторида образуется осадок фторида тория. Конец титрования может быть обнаружен с помощью ализарина S, который с избытком тория дает красное окрашивание. Определение можно проводить в растворе, pH которого приведен к 2,9—3,1 добавлением буфера. [c.1103]

Щелочь, добавленная к буферу, взаимодействует с солью, в результате чего образуется слабое осно- [c.104]

Титрование раствором соли тория в присутствии ализарина. При добавлении соли тория к раствору фторида образуется осадок фторида тория. Конец титрования может быть обнаружен с помощью ализарина S, который с избытком тория дает красное окрашивание. Определение можно проводить в растворе, pH которого приведен к 2,9—3,1 добавлением буфера. [c.885]

Докладывалось об изучении по-13, 15] в ходе этой работы удалось разделить с высоким разрешением такие белки, как миоглобин, цитохром с, лизоцим, используя 0,1 М фосфат (pH 2,1, суммарное содержание электролитов 0,2 моль/л) и градиент концентрации ацетонитрила. Для оптимального разделения оказалось необходимым использовать и солевые эффекты, и низкие pH большую роль сыграла концентрация органического растворителя. В кислых буферах (pH 2) боковые цепи Asp и Glu остаются незаряженными, что увеличивает гидрофобность полипептида. Добавление солей приводит к подавлению ионных взаимодействий с носителем. Ацетонитрил как органический растворитель и фосфат как солевой фон использованы неслучайно это дает возможность регистрировать в элюате пептиды по поглощению пептидной связи при 215 нм. [c.209]

Было установлено, что защитный эффект применения хро-матно полифосфатного буфера также увеличивается при добавлении в воду солей кобальта, марганца, кадмия, никеля. Добавление же в воду солей железа, меди, сурьмы, алюминия и некоторых других металлов снижает защитное действие этих ингибиторов. [c.95]

Для адсорбции белков достаточно перемешать раствор после добавления геля до получения однородной суспензии. После центрифугирования осадок отбрасывают, если ставилась задача адсорбировать балластные белки. Если адсорбирован фермент, осадок геля промывают несколько раз водой или слабым буферным раствором (если это не сопровождается потерей фермента). Для элюции фермента используют слабощелочной буферный раствор более высокой концентрации, чем тот, что использовался при промывании геля. Если фермент элюируется плохо, в буфер для увеличения элюции добавляют соль, [c.204]

При добавлении кислоты или кислотного буфера равновесие сдвигается влево, диссоциация подавляется, зоны элюирования при этом становятся острее. Подавить с помощью кислоты диссоциацию более кислых проб, которые при рН=2 еще полностью диссоциированы, нельзя, в частности, потому, что необходима специальная коррозионностойкая аппаратура. Если добавить к элюенту подходящий противоион, например четвертичную аммониевую соль, то образуется соль органического основания карбоновой кислоты. Само собой разумеется, что коэффициент распределения у этой ионной пары иной, чем у свободной кислоты. Реакция образования ионной пары включает [c.93]

Колонкп Оксиапатита обычно предварительно промывают 5 — 10 объемами слабого ( 0,05 М) нейтрального фосфатного буфера. Если стабильность белка требует определенной ионной силы, ее обеспечивают добавлением в буфер для промывки и элюент соли. Элюцию кислых белков ведут ступенчатым или линейным градиентом концентрации фосфатного буфера — вплоть до 0,8 М. Особо прочно сорбированные белки нередко снимают пирофосфатом. Емкость колонки оксиапатита обычно составляет примерно 1—5 мг белка па 1 мл объема колонки, выход белков — 8O —100%. Утрата ферментативной активности наблюдается редко — метод относительно мягок . I По-видимому, механизм сорбции (в частности, [c.228]

Как и у обменника, заряды цвиттерионов и заряды на поверхности амфолптои блокируются сменяющими друг друга контрионами. Это относится к зарядам и К0нтри01гаы обоих знаков. Наличие последних обеспечивается добавлением соли или составом буфера. [c.259]

После добавления СТАВ-буфера для осаждения нуклеиновые кислоты можно оставить для формирования осадка на более длительное вре.мя, даже на ночь, если поддерживается температура выше 20°С. Необходимо убедиться, что СТАВ-буфер для осаждения хорошо перемешан. В связи с тем что в нем не содержится соли, этот буфер оказывается легче гораздо более плотного СТАВ-буфера для экстракции. При добавлении буфера для осаждения иногда образуются осадки комплексов нуклеиновая кислота/СТАВ не совсем белого цвета. В некоторых случаях они волокнистые либо может постепенно образовываться мелкодисперсный осадок. Следует обратить внимание, какой осадок образуется при осаждении нуклеиновых кислот из каждого образца, и определить, обусловлен ли данный тип осадка низким выходом либо чрезмерным загрязнением. Если осадок не образуется, возможно, что клетки содержат значительные количества солей, и для снижения их концентрации можно дополнительно добавить СТАВ-буфер для осаждения. Если нуклеиновые квелоты по- [c.244]

При добавлении ЫНз к раствору соли марганца (И) в аммонийном буфере осадка не образуется (в этом случае также может идти быстрое окисление до марганца (IV)). На основе теории кислот и оснований Бренстеда, поясните роль ионов NHi+. Кроме того, следует учитывать, что ион марганца (II) образует гексаминный комплекс, благодаря чему концентрация свободных (точнее, гидратированных) ионов марганца(II) уменьшается. [c.631]

Значение концентрации компонентов для величины буферной емкости объясняется тем, что соотношение [кислота] [соль], от которого зависит pH буферной смеси, будет изменяться тем меньше при добавлении кислот и щелочей, чем выше значение числителя и знаменателя. Так, допустим, что пмеются два ацетатных буфера, концентрация компонентов в которых составляет 10 и 100 мг-экв. Соотношение [кислота] [соль] у них одинаково и равно 1. [c.96]

В заключение, как обычно, неспецифически сорбированный материал удаляют чередующимися промывками кислым и щелочным буферами с добавкой соли (сы. выше). Хранить готовый сорбент можно в кислом или нейтральном буфере на холоду, лучше с добавлением Na l (до 1М) и бактериостатического агента. [c.383]

Получение препарата S R. Препарат Кейлина—Хартри (получение см. на с. 407) суспендируют в 0,1 М фосфатном буфере (натриевые соли), содержащем 0,2 мМ ЭДТА, pH 7,4. Содержание белка в суспензии доводят до 30 мг/мл. Стакан с суспензией помещают на лед и при хорощем перемешивании (магнитная мешалка) медленно добавляют холат натрия (pH 7,4) из 10—20%-ного раствора до конечной концентрации 1%. К суспензии, содержащей детергент, небольшими порциями шпателем добавляют мелко растертый сульфат аммония из расчета 144 г/л. После добавления каждой трети требуемого количества сульфата аммония pH суспензии проверяют и при необходимости доводят до 7,4 концентрированным раствором аммиака. Смесь оставляют при хорошем перемешивании на холоде на 1 ч и после этого добавляют сульфат аммония из расчета 61 г/л. pH суспензии проверяют и при необходимости доводят до 7,4. Спустя 20 мин смесь центрифугируют при 40 000gf в течение 1 ч. Прозрачный краснооранжевый супернатант сливают в охлажденный мерный цилиндр через 4 слоя марли, избегая вспенивания и загрязнения супернатанта рыхлым слоем осадка. [c.427]

Определение осаждением изатин- -оксимом. При добавлении к растворам солей уранила изатин-Р-оксима в присутствии ацетатного буфера уран осаждается в виде желтовато-оранжевого осадка [613, 614]. Состав осадка соответствует формуле и02(СдН5М302)2 однако вследствие частичной адсорбции осадком переменных количеств осадителя прямое взвешивание его после высушивания при 105—110° не обеспечивает получения точных результатов. Вследствие этого определение заканчивают прокаливанием и взвешиванием в виде закиси-окиси урана. [c.74]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология